оак в какую пробирку берут

Содержание
  1. Вакуумные пробирки по цветам
  2. Что означают разноцветные крышечки на пробирках?
  3. Правила забора анализов
  4. Правила забора крови.
  5. Исследование на биохимический анализ крови.
  6. Как сдавать анализ крови на сахар.
  7. Гликемический профиль.
  8. Сахарная кривая.
  9. Правила сбора мочи.
  10. Правила сбора мокроты.
  11. Исследование отделяемого мочеполовых органов.
  12. Цитология.
  13. Подготовка к мазку:
  14. Копрограмма.
  15. Анализ кала на яйца гельминтов (яйца глистов).
  16. Анализ кала на скрытую кровь.
  17. Забор и хранение биологического материала (кровь) для исследований аутоантител методом ИФА (инфекции)
  18. Забор и хранение биологического материала (кровь) для исследований на сифилис
  19. Правила взятия, хранения и транспортировки биоматериала для бактериологических исследований
  20. Правила забора мочи:
  21. Особенности забора мочи:
  22. Правила забора мокроты.
  23. Правила забора испражнений на дисбактериоз.
  24. Цветовая кодировка вакуумных пробирок VACUETTE
  25. Цветовая кодировка вакуумных пробирок VACUETTE
  26. 1. Пробирка с голубой крышкой (с цитратом натрия).
  27. 2. Пробирка с красной крышкой (с диоксидом кремния и разделительным гелем).
  28. 3. Пробирка с зеленой крышкой (с гепарином).
  29. 4. Пробирка с фиолетовой крышкой (ЭДТА).
  30. 5. Пробирка с розовой крышкой (с апротинином и КЭДТА)
  31. 6. Пробирка с серой крышкой (с разными реагентами: лития гепарин и монойодацетат или натрия фторид и калия оксалат).
  32. 7. Пробирки с желтой крышкой (с лимонной кислотой, натрия цитратом, декстрозой).
  33. 8. Пробирки с черной крышкой (с цитратом натрия).
  34. Оак в какую пробирку берут

Вакуумные пробирки по цветам

Исследование крови позволяет медицинским работникам получить исчерпывающую информацию о состоянии организма пациента. Благодаря современному инструментарию процедура взятия крови проводится быстро и практически безболезненно. Использование вакуумных пробирок для забора крови необходимо, как для упрощения техники взятия крови и защиты лаборанта, так и для получения точных результатов анализа. Вакуумные пробирки снабжаются крышечками разных цветов в зависимости от того, для какого именно исследования производится забор крови.

В ежедневной практической деятельности лаборант сталкивается с необходимостью забора биоматериалов для самых разных исследований. Венозная кровь – очень информативный биологический материал, позволяющий проанализировать состояние всех органов и систем организма. В зависимости от того, для какого анализа пациент сдает кровь, подбирается пробирка с нужной крышкой и наполнителем внутри. Цвета крышек вакуумных пробирок означают:

Что означают разноцветные крышечки на пробирках?

sell vacuum blood

Использование вакуумных пробирок для крови по цветам упрощает процесс лабораторной диагностики и позволяет получить достоверные результаты различных исследований в краткие сроки. ЗАО «Европейская Лабораторная Компания» предлагает вакуумные пробирки, иглы и другие качественные одноразовые инструменты для взятия крови по доступным ценам.

Источник

Правила забора анализов

5

Правила забора крови.

Взятие крови осуществляется натощак, в утренние часы. В случае острой необходимости взятие крови может проводиться в любое время суток, однако желательно, чтобы с момента последнего приема пищи прошло не менее 3 часов. Существуют общие факторы, влияющие на результат исследований:

Поэтому следует соблюдать следующие условия:

Забор крови для биохимического исследования, гормональных исследований и исследований сыворотки крови на инфекции (ПЦР-диагностика), осуществляется в пластиковые контейнеры без антикоагулянта. Забор крови для общеклинического исследования осуществляется в специальные пластиковые контейнеры с антикоагулянтом.

Исследование на биохимический анализ крови.

Как сдавать анализ крови на сахар.

Чтобы получить объективный результат, необходимо соблюдать определенные условия перед сдачей анализа крови:

Гликемический профиль.

Гликемический профиль – это динамическое наблюдение за уровнем сахара в крови в течение суток. Обычно производят 6 или 8 заборов крови из пальца для определения уровня глюкозы: перед каждым приемом пищи и через 90 минут после еды. Определение гликемического профиля проводится пациентам принимающим инсулин по поводу сахарного диабета. Благодаря такому динамическому наблюдению за уровнем глюкозы крови можно определить насколько назначенная терапия позволяет скомпенсировать сахарный диабет. Оценка результатов гликемического профиля:Для сахарного диабета I типа уровень глюкозы считается компенсированным, если ее концентрация натощак и в течение суток не превышает 10 ммоль/л. Для данной формы заболевания допустима небольшая потеря сахара с мочой – до 30 г/сут.

· Сахарный диабет II типа считается скомпенсированным, если концентрация глюкозы в крови утром не превышает 6,0 ммоль/л, а в течение дня – до 8,25 ммоль/л. Глюкоза в моче определяться не должна.

Сахарная кривая.

СТТГ – стандартный тест толерантности к глюкозе (сахарная кривая). Также называется Глюкозотолерантный тест (ГТТ). Он показывает состояние углеводного обмена. Проводится СТТГ натощак (последний прием пищи – в ужин, за 12 часов до проведения СТТГ), с нагрузкой глюкозой 1,75 г/кг массы тела, но не более 75 г на прием. Учитывается уровень сахара натощак, через час и через 2 часа после нагрузки. У здорового человека уровень сахара в крови натощак менее 5,5 ммоль/л, при нарушении толерантности к глюкозе (старое название – латентный, или скрытый, сахарный диабет) – от 5,5 до 7 ммоль/л, при сахарном диабете (СД) – более 7 ммоль/л. Через час у здорового человека уровень сахара поднимается не более чем на 30% от исходного уровня. Через 2 часа сахар в крови у здорового человека менее 7,2 ммоль/л, при нарушении толерантности к глюкозе (НТГ) – от 7,2 до 11 ммоль/л. Повышение уровня сахара более 11 ммоль/л говорит о наличии сахарного диабета.

Правила сбора мочи.

Мочу собирают после тщательного туалета наружных половых органов в стерильную бакпечатку с герметичной крышкой. При подозрении на уретрит собирают первую порцию мочи (в начале мочеиспускания), в остальных случаях среднюю порцию мочи (в середине мочеиспускания). Мочу собирают в количестве 10-30 мл. Время доставки в лабораторию – не более 3 часов. Мочу собирают утром, натощак, сазу после сна. Перед сбором мочи проводят тщательный туалет наружных половых органов. Длительное хранение мочи при комнатной температуре до исследования приводит к изменению физических свойств, разрушению клеток и размножению бактерий. В связи с этим, некоторое время мочу можно хранить в холодильнике, но не доводить до замерзания! Доставлять в лабораторию мочу следует в бакпечатке или бутылке из темного стекла. Различные виды исследования мочи.

· Общий анализ мочи. Собирают всю порцию утренней мочи при свободном мочеиспускании в чистую стеклянную емкость, тщательно перемешивают и отливают 50-100 мл в емкость для доставки в лабораторию.

· Анализ мочи по Нечипоренко. Собирают СРЕДНЮЮ ПОРЦИЮ утренней мочи при свободном мочеиспускании в емкость для доставки в лабораторию.

Показания к исследованию: острые и хронические гнойно-воспалительные заболевания мочевыводящей системы (цистит, уретрит, пиелонефрит).

Правила сбора мокроты.

Утреннюю мокроту (до приема пищи), выделяющуюся во время приступа кашля, собирают в стерильную банку или в стерильный контейнер (бакпечатку) с герметичной крышкой. Перед сбором материала необходимо почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой с целью механического удаления остатков пищи и микрофлоры ротовой полости. Если мокрота отделяется в скудном количестве, необходимо накануне сбора материала принять отхаркивающие средства. Можно применять аэрозольную ингаляцию, провоцирующую усиление секреции бронхов или использовать ингаляцию горячего солевого гипертонического раствора в течение 10-20 минут. Мокроту можно хранить до исследования в холодильнике при 3-5 С◦ не более 3 часов.

Читайте также:  название какого архитектурного стиля переводится с французского как империя

Показания к исследованию: инфекции дыхательных путей, бронхит, пневмония.

Исследование отделяемого мочеполовых органов.

Материал для микроскопического исследования (мазок) берут специальным стерильным одноразовым зондом-щеткой и равномерно размазывают на предметном стекле. При размещении на одном стекле мазков из разных локализаций, МЕСТА НАНЕСЕНИЯ МАЗКА ДОЛЖНЫ БЫТЬ ПОМЕЧЕНЫ: «U» – уретра, «V» – влагалище, «C» – цервикальный канал. Забор материала производится сотрудниками лечебных отделений:

· Гинекологом (для женщин);

· Урологом (для мужчин).

Цитология.

Цитологический мазок берется, согласно требованиям, из трех участков слизистой влагалища: из его сводов, с внешней поверхности шейки матки и из канала шейки матки. При этом используется специальный шпатель. После взятия каждый образец наносится на стекло, а затем отправляется на тщательный анализ в цитологическую лабораторию. Там, в свою очередь, цитологические мазки детально изучаются на предмет наличия малейших отклонений в строении клеток. Рекомендуемая частота взятия мазка составляет раз в год или полтора года.

Подготовка к мазку:

· Вагинальные препараты (кроме выписанных врачом)

· Вагинальные контрацептивны такие как контрацептивные пены, кремы или желе.

Мазок не должен быть болезненным. Если женщина испытывает боль во время теста, она должна обратить на это внимание врача.

Копрограмма.

За 7—10 дней до сдачи анализа отменить лекарственные препараты (все слабительные, препараты висмута, железа, ректальные свечи на жировой основе, ферменты и другие препараты, влияющие на процессы переваривания и всасывания). Нельзя накануне делать клизмы. После рентгенологического исследования желудка и кишечника проведение анализа кала возможно не ранее, чем через двое суток. В течение 4—5 дней необходимо придерживаться следующей диеты: молоко, молочные продукты, каши, картофельное пюре, белый хлеб с маслом, 1—2 яйца всмятку, немного свежих фруктов. Кал собирается после самостоятельного опорожнения кишечника в одноразовый пластиковый контейнер с герметичной крышкой. Следует избегать примеси к калу мочи. Контейнер с калом необходимо доставить в лабораторию в день сбора материала, до отправки хранить в холодильнике (4—6 С0).

Анализ кала на яйца гельминтов (яйца глистов).

Кал собирают в одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой и ложечкой в количестве не более 1/3 объема контейнера. Материал должен быть доставлен в лабораторию в этот же день. Во время сбора избегать примесей мочи, отделяемого половых органов. Показания к назначению анализа:

· Подозрение на заражение гельминтами;

· «Барьерный» анализ (при госпитализации, оформлении медицинской книжки и т. д.)

Анализ кала на скрытую кровь.

За 7—10 дней до сдачи анализа отменить лекарственные препараты (все слабительные, препараты висмута, железа). Нельзя накануне делать клизмы. После рентгенологического исследования желудка и кишечника проведение анализа кала назначается не ранее, чем через двое суток. До анализа за три дня исключить из рациона мясо, печень и все продукты, содержащие железо (яблоки, перец болгарский, шпинат, белую фасоль, зеленый лук). Кал собирается после самостоятельного опорожнения кишечника в одноразовый пластиковый контейнер с герметичной крышкой. Следует избегать примеси к калу мочи. Контейнер с калом необходимо доставить в лабораторию в день сбора материала, до отправки хранить в холодильнике (4—6 С0).

Забор и хранение биологического материала (кровь) для исследований аутоантител методом ИФА (инфекции)

Забор и хранение биологического материала (кровь) для исследований на сифилис

Особенности взятия биоматериала: Кровь для исследования на сифилис, РИФ берут из локтевой вены натощак или не ранее чем через 4 ч после приема пищи (при динамическом наблюдении – всегда в одни и те же часы) отправляется в лабораторию в день забора. До следующего дня кровь хранить нельзя!

Правила взятия, хранения и транспортировки биоматериала для иммунохимических исследований и маркёров инфекционных заболеваний

Общие рекомендации: забор крови производят в утренние часы, строго натощак в комфортных для пациентах психологических условиях. Накануне взятия крови исключить физические нагрузки, стрессовые ситуации, физиотерапевтические процедуры; прием лекарственных средств (решение об отмене медикаментозного лечения принимает лечащий врач), оральных контрацептивов; употребление спиртных напитков и жирной пищи. Непосредственно перед исследованием не курить. Исследованию подлежит сыворотка, не содержащая примеси эритроцитов, бактериальных проростов, хилёза, гемолиза. При наличии любого из указанных признаков сыворотка уничтожается и назначается повторное взятие крови.

Материалом для исследования является венозная кровь, которая берется из локтевой вены

Правила взятия, хранения и транспортировки биоматериала для бактериологических исследований

6 1

7 1

Для получения достоверных результатов клинический материал на исследования должен забираться до назначения антибактериальных и биопрепаратов или через 2 недели после их отмены. Пробу следует передать в лабораторию не позднее 2 ч с момента сбора.

Правила забора мочи:

Особенности забора мочи:

— у маленьких детей. После мочеиспускания провести тщательный туалет наружных половых органов, напоить ребенка и ожидать следующего мочеиспускания для забора мочи;

— у женщин. Перед забором закрыть влагалище ватным тампоном.

Правила забора мокроты.

Исследуют свободно откашливаемую мокроту (предпочтительно утреннюю), натощак. Пациент предварительно должен почистить зубы и сполоснуть рот и горло водой. Нельзя собирать слюну и носоглоточное отделяемое. В домашних условиях для лучшего разжижения мокроты можно дать горячее обильное питье, сделать массаж спины. Мокроту собирают в стерильный пластиковый контейнер с завинчивающейся крышкой.

Правила забора испражнений на дисбактериоз.

Несколько дней до исследования не следует принимать активированный уголь и биопрепараты. Отбор материала производят в день сдачи анализа. Горшок или судно предварительно дезинфицируют, тщательно моют в мыльной воде, ополаскивают, обрабатывают кипятком, остужают. Для сбора испражнений нельзя использовать туалетную бумагу, нельзя загрязнять мочой. Допустим забор материала с памперса или с проглаженной пеленки. Для сбора испражнений рекомендуется стерильный пластиковый контейнер с лопаточкой и завинчивающейся крышкой.

Материал для анализа забирают лопаточкой, вмонтированной в крышку флакона, из средней и последней порций кала (3-4 лопаточки – 1,5-2 г). Жидкими фекалиями заполняют не более 1/3 флакона.

При отсутствии возможности доставки в лабораторию материала в течение 2 часов, пробу возможно хранить при температуре +8°С не более 5 часов.

Правила забора грудного молока

В день обследования утром женщина принимает душ и надевает чистое белье. Перед сцеживанием молока необходимо вымыть руки с мылом, одеть маску. Затем следует обмыть левую и правую грудную железу теплой водой с мылом и насухо вытереть чистым полотенцем. Поверхность сосков и околососковую область молочных желез необходимо обработать отдельными ватными тампонами, смоченными 70°С этиловым спиртом. Первая порция грудного молока выливается, последующие 3-4 мл сцеживаются из каждой железы в отдельную стерильную посуду (контейнер). В течение 2 часов грудное молоко должно быть доставлено в лабораторию.

Читайте также:  в каких играх нет трейд бана 7 дней

В случае исследования раневого отделяемого, забор материала из раны проводится до перевязки.

При исследовании мазков из зева, взятие материала ведется до употребления пищи, пациенту не рекомендуется чистить зубы.

При взятии мазков с конъюнктивы, не рекомендуется проведение предварительной санитарной обработки (умывание), необходимо в утро дня сдачи анализа отказаться от закапывания лекарственных препаратов в глаза.

Бюджетное учреждение ХМАО Югры
МЕГИОНСКАЯ ГОРОДСКАЯ БОЛЬНИЦА

Источник

Цветовая кодировка вакуумных пробирок VACUETTE

Цветовая кодировка вакуумных пробирок VACUETTE

В современном мире все больше внимания уделяется лабораторным исследованиям и качеству их проведения.

На что больше всего обращает внимания любой человек, увидевший пробирку? Яркий цвет колпачка! Это не просто дизайнерское решение, это удобство медсестер и лаборантов. Данные требования отражены в ГОСТ ISO 6710-2011 «Контейнеры для сбора образцов венозной крови одноразовые. Технические требования и методы испытаний» и ГОСТ Р 53079.4-2008 «Технологии лабораторные клинические. Обеспечение качества клинических лабораторных исследований. Часть 4. Правила ведения преаналитического этапа».

Итак, что же означают эти яркие колпачки. Каждая пробирка имеет определенный реагент или же не имеет его, что тоже кодируется определенным цветом. Рассмотрим подробнее, каждый цвет и реагент.

blue tube griner

1. Пробирка с голубой крышкой (с цитратом натрия).

В данной пробирке имеется забуференный раствор натрия цитрата в возможных процентных соотношениях 3,2 и 2,8. Этот тип пробирок используется для исследования системы гемостаза (коагулограмма). В данный тип исследования входят такие показатели, как: АЧТВ, протромбин, фибриноген, тромбиновое время и другие.
Также пробирки с голубой крышкой могут содержать в себе реагент CTAD. Настоящий реагент используется для тех же исследований, но его применяют при исследовании пациентов, получающих антикоагулянтную терапию. В состав реагента входит забуференный цитрат натрия, теофиллин, аденозин и дипиридамол.

red tube grainer

2. Пробирка с красной крышкой (с диоксидом кремния и разделительным гелем).

Данные пробирки используют для исследования сыворотки крови. Сыворотка крови, в отличие от плазмы, не содержит фибриногена, следовательно, чтобы получить пробу сыворотки, нужно активировать процесс свертывания пробы.

В пробирках с красной крышкой происходит активация данного процесса за счет диоксида кремния (SiО2) нанесенного на внутренние стенки в виде микрочастиц. Помимо реагента, в пробирках данного типа может содержаться разделительный гель. Он создает надежный барьер между сгустком и сывороткой, что важно во время хранения и транспортировки пробы. Пробирки с активатором свертывания используют для исследований в: биохимии, иммунологии, микробиологии, серологии и другие.

green tube greiner

3. Пробирка с зеленой крышкой (с гепарином).

В отличие от пробирок с красной крышкой, служат для получения плазмы.

В них должен содержаться реагент, блокирующий процесс свертывания. В пробирках с зелеными крышками содержится антикоагулянт гепарин (натрий гепарин, литий гепарин, аммоний гепарин). В пробирках этого типа, также может содержаться гель для большей стабильности образца. Он создает надежный барьер между плазмой и форменными элементами во время транспортировки. Пробирки с антикоагулянтом могут использоваться для таких исследований как: электролитный состав крови, газовый состав крови, содержание алкоголя в крови.

purple tube greiner

4. Пробирка с фиолетовой крышкой (ЭДТА).

Реагент, содержащийся в данных пробирках связывает ионы кальция и блокирует процесс свертывания. Реагент состоит из этилендиаминуксусной кислоты (ЭДТА). ЭДТА-к2 или ЭДТА-к3 нанесена на внутренние стенки пробирки. Эти пробирки переназначены для гематологических исследований (качественный и количественный состав крови). Для молекулярно-генетических исследований и определения вирусной нагрузки применяются пробирки с ЭДТА и разделительным гелем.

pink tube grainer

5. Пробирка с розовой крышкой (с апротинином и КЭДТА)

В данной пробирке содержится реагент КЭДТА и апротинин (устойчивый белок, выделенный из бычьих легких) – ингибитор тканевых и сывороточных протеолитических ферментов (трипсин, хемитрипсин, плазмин, калликреин). Этот реагент помогает стабилизировать нестабильные и проблемные аналиты (например, некоторые гормоны).

grey tube grainer

6. Пробирка с серой крышкой (с разными реагентами: лития гепарин и монойодацетат или натрия фторид и калия оксалат).

Специальные пробирки для исследования глюкозы с несколькими вариантами реагентов: монойодацетат и лития гепарин, натрия фторид и калия оксалат, натрия фторид и КзЭДТА. Благодаря тому, что реагент в своем составе содержит не только антикоагулянт, но и стабилизатор уровня глюкозы, проба может сохранять свою стабильность до 48 часов при комнатной температуре.

yelow tube greiner

7. Пробирки с желтой крышкой (с лимонной кислотой, натрия цитратом, декстрозой).

black tube grainer

8. Пробирки с черной крышкой (с цитратом натрия).

Используются для определения СОЭ и в составе реагента имеют 3,2% цитрат натрия.

Данный материал носит ознакомительный характер и не может использоваться в качестве обучающего.

Источник

Оак в какую пробирку берут

Вакуумная пробирка — основной инструмент для забора венозной крови. Она может быть наполнена реагентом, который позволит провести быстрый и точный анализ. В таком случае каждая пробирка имеет колпачок своего цвета. Цветное кодирование соответствует международному стандарту ISO 6710.

Вакуумные пробирки для получения сыворотки (биохимия, серология). Цвет крышечки – коричневый или красный

Сыворотка крови – жидкая часть крови лишенная форменных элементов и некоторых белков (фибрин и др.) в отличие от плазмы, в которой сохраняются все элементы жидкой части крови кроме форменных элементов.

Получение сыворотки крови является результатом двухступенчатого биохимического процесса: свертывания (коагуляции) крови и ретракции (уплотнения) сгустка. Для запуска коагуляционного каскада необходимо наличие внешнего активатора, каковым может служить кремния диоксид, поэтому процесс свертывания крови быстрее происходит в стеклянных пробирках, так как кремния диоксид является базовым материалом стекла или в пластиковых пробирках с активатором свертывания. Активатор свертывания (clot activator) выполнен в виде напыления на внутренней стенке пробирки.
После образования сгустка начинается этап его уплотнения и выделения сыворотки. На практике ретракция сгустка ускоряется центрифугированием пробирок с кровью.
Для получения максимально чистой сыворотки рекомендуется соблюдение трех условий:
1. После забора крови в пробирку в соответствии с инструкцией необходимо осторожно однократно перевернуть пробирку для более полного контакта крови с активатором свертывания;
2. Дождаться завершения процесса свертывания крови в течение 20-30 минут при комнатной температуре и вертикальном положении пробирки;
3. Центрифугировать пробирку со свернувшейся кровью не менее 10 минут с ускорением 1500 G (примерно 3000 об/мин) для максимального выдавливания сыворотки из сгустка. При необходимости допускается центрифугирование с ускорением 4000G c крышечкой и до 12000G без крышечки.
После центрифугирования и полной ретракции сгустка сыворотка располагается над сгустком, но в контакте с ним. Сохраняется опасность загрязнения сыворотки составляющими сгустка при неосторожном обращении с пробиркой (встряхивание, опрокидывание и пр.). Для лучшего очищения сыворотки и более полного разграничения сыворотки и сгустка применяются специальные пробирки, содержащие биологически инертный олефиновый гель. Последний представляет собой тиксотропный кополимер, который тяжелее сыворотки, но легче кровяного сгустка, поэтому после центрифугирования гель в виде тонкой полоски занимает промежуточное положение и служит разделительным барьером. Стабильность такого барьера гарантирована в течение 5-7 дней при хранении пробирки с кровью при комнатной температуре.
Оптимальные сроки сохранности образца крови в данных пробирках составляет при комнатной температуре 6 часов, при хранении в холодильнике (+4ºС) – 24 часа. Повторное центрифугирование пробирок, особенно с гелем, не допускается.
Полученная сыворотка крови применяется для очень широкого спектра лабораторных биохимических, ИФА и иммунологических исследований:
белковый состав, ферменты, гормоны, онкомаркеры, ВИЧ-инфицирование, гепатиты и пр.

Читайте также:  какие обязанности определяет трудовой кодекс российской федерации тест сдо

Вакуумные пробирки для получения цельной крови или плазмы

Не все анализы в клинике делаются из сыворотки крови. Для многих видов исследований необходима цельная кровь, содержащая форменные элементы, или плазма, освобожденная от клеток крови центрифугированием. С целью получения несвернувшейся крови разработаны пробирки с определенными добавками – антикоагулянтами. На практике используют два вида антикоагулянтов:
ингибиторы (вещества, вызывающие торможение) тромбина. Тромбин является ключевым игроком в коагуляционном каскаде. Он принимает участие в формировании ряда факторов свертывания крови и способствует трансформации фибриногена в фибрин. Добавление биохимических ингибиторов тромбина эффективно активирует антикоагуляционные свойства крови.
связывание (удаление) ионов Ca2+. При прочих равных условиях свертывание крови происходит при активном участии ионов Ca2+. Удаление их является эффективным механизмом сохранения крови в жидком состоянии.

Гепарин. Цвет крышечки – зеленый, светло-зеленый

Для более чистого разграничения плазмы крови и сгустка применяются специальные пробирки, содержащие кроме гепарина инертный олефиновый гель. Последний представляет собой тиксотропный кополимер, который тяжелее плазмы, но легче форменных клеток крови, поэтому после центрифугирования гель в виде тонкой полоски занимает промежуточное положение и служит разделительным барьером.

Фторид натрия/ЭДТА калия. Цвет крышечки – серый

Добавление фторида натрия и ЭДТА калия в пробирку позволяет предотвратить разрушение глюкозы крови (процесс, называемый гликолизом) и сохранить ее уровень во взятом образце крови.
Фторид натрия и оксалат калия выступают в качестве антикоагулянтов, связывая ионы Са2+ и, кроме того, фторид натрия стабилизирует уровень глюкозы.
Глюкоза разрушается до пирувата и лактата при последовательном осуществлении различных энзиматических реакций. Фторид натрия ингибирует некоторые ферментативные реакции, включая превращение фосфоглицерата в фосфоенолпируватацид, и предотвращает гликолиз.
Для получения качественного результата анализа необходимо:
немедленно после взятия крови осторожно перевернуть пробирку 5-7 раз для лучшего перемешивания крови и антикоагулянта
плазма отделяется после центрифугирования. Нормальные скорости центрифугирования – 1000-1500G (2000-3000 об/мин).
Пробирки с добавлением фторида натрия и оксалата калия используют для проведения определения уровня сахара (глюкозы) в крови. Соотношение компонентов 1/1, общее количество добавляемых реагентов – 4,5 мг/1 мл забираемой в пробирку крови.

Замечания: Фторид блокирует активность уреазы и некоторых других ферментов. Образцы крови из данных пробирок нельзя использовать для прямого определения энзимов. Фторид натрия и ЭДТА калия связывают ион Са2+, заменяя в крови 1 ион кальция на 2 иона натрия или калия. Следствием этого является повышение напряжения ионов в межклеточной жидкости и выкачивание воды из внутриклеточного пространства в межклеточное, сморщивание клеток крови с умеренным «выдавливанием» из эритроцитов гемоглобина. Поэтому видимый гемолиз свойственен образцам крови с данной добавкой.
Глюкоза превращается в лактат в результате комплекса реакций, включающего в себя различные этапы. Фторид ингибирует один их последних этапов разрушения глюкозы, начальные этапы с участием гексокиназы и фосфофруктокиназы блокируются менее эффективно, поэтому можно наблюдать снижение содержания глюкозы в образце крови на 6-7% от первоначального.
После первоначального незначительного снижения уровня глюкозы ее количество остается постоянным при хранении крови в пробирке в течение 8-10 часов при температуре до 25ºС и в течение 2-3 дней в холодильнике (+4ºС).

Этилендиаминтетраацетат (ЭДТА) является предпочтительным антикоагулянтом для гематологических исследований. ЭДТА и его щелочные соли способны создавать хелатные соединения с ионами кальция с образованием растворимых высокостабильных комплексов. Наиболее эффективная концентрация ЭДТА – 1,2 мг/мл крови. Во всем мире используют три варианта солей ЭДТА: ЭДТА-К3, ЭДТА-К2 и ЭДТА-Na2. Наиболее предпочтительной и рекомендуемой Международной Комиссией по Стандартизации в Гематологии является двукалиевая соль ЭДТА:

ЭДТА-К3 показывает меньшую способность поддержания крови в жидком состоянии, также ЭДТА-К3 влияет на подсчет лейкоцитов, занижая их количество.
различия между ЭДТА-К2 и ЭДТА-Na2 в клиническом плане незначительны и ими можно пренебречь, но ЭДТА-Na2 хуже растворим.

Для получения качественного результата анализа необходимо:
немедленно после взятия крови осторожно перевернуть пробирку 5-7 раз для лучшего перемешивания крови и антикоагулянта;
плазма отделяется после центрифугирования. Нормальные скорости центрифугирования – 1000-1500G (2000-3000 об/мин). При необходимости допускается центрифугирование с ускорением 4000G c крышечкой и до 12000G без крышечки.

Наиболее широко используются пробирки, содержащие 1,95 мг ЭДТА/1мл крови. Они нашли свое применение в таких областях лабораторной практики, как:
гематологические исследования – подсчет клеток крови, определение СОЭ и пр.
ПЦР-исследования (качественные и количественные методики).

Пробирки с образцами крови можно хранить до 6-10 часов при 4ºС, хранение свыше 24 часов не рекомендуется из-за снижения числа эритроцитов и лейкоцитов.

Цитрат натрия является антикоагулянтом для сбора венозной крови с це6лью проведения исследований коагуляционных свойств крови.

Процесс свертывания крови представляет собой последовательность сложных реакций, в которых результатом первых реакций (с участием активных ферментов) является активация следующих, первоначально неактивных энзимов. Последним активным ферментом в этой цепочке присутствует тромбин, который осуществляет превращение фибриногена в фибрин. Нити фибрина опутывают клетки крови и окончательно формируют кровяной сгусток. Крайне важную роль на этом этапе играют ионы Са2+. Антикоагуляционные свойства цитрата проявляются в формировании комплекса с ионами Са2+ и эффективном удалении их из крови.

Общее исследование свертывания крови определяется временем, необходимым для последовательной активации ферментов, участвующих в коагуляционном процессе. Проводится определение времени активации и количественное измерение различных составляющих коагуляционного каскада, для чего создаются так называемые «обходные пути» добавлением некоторых промежуточных продуктов свертывания.

Наиболее часто используются пробирки с 3,8% или 3,2% раствором цитрата натрия (0,129 моль/л), соотношение цитрата к количеству забираемой крови 1/9.

Для максимально качественного проведения коагулологических исследований рекомендуется соблюдение определенных правил:
нельзя использовать пробирку для взятия крови на коагуляционные тесты первой, сразу после венепункции, так как на результаты может повлиять выделяющийся при пункции тканевой тромбопластин;
венозный жгут во время взятия крови в пробирку должен быть снят;
немедленно после взятия крови пробирку аккуратно переворачивают 5-6 раз для лучшего перемешивания крови и антикоагулянта;
сразу после этого надо проверить количество взятой крови: ее верхняя граница должна быть на уровне голубой полоски на этикетке.

Оптимальными условиями хранения пробирки с образцом крови является температура 20-24ºС и исследование коагуляционных свойств и факторов свертывания крови должно быть проведено в течение 2-х часов с момента взятия крови

Источник

admin
Своими руками
Adblock
detector